Influencia del medio de cultivo en la multiplicación in vitro de Xanthosoma, cvs. ‘INIVIT MX-2007’ y ‘México-8’

Contenido principal del artículo

Milagros Basail Pérez
Víctor Reinaldo Medero Vega
Arletys Santos Pino
Yadenys Torres Núñez
Ania Robaina Jiménez
Jorge López Torres
Aymé Rayas Cabrera
Yoel Beovides García
Dayana Rodríguez González
Yenisey Gutiérrez Sánchez

Resumen

El género de malanga Xanthosoma es el de mayor importancia para la población con relación a otras aráceas comestibles. El incremento de los rendimientos en este cultivo depende de la aplicación de las técnicas biotecnológicas. La producción del material de plantación por métodos biotecnológicos puede contribuir a cumplir con la demanda de explantes por lo que se definió como objetivo determinar la concentración de los reguladores del crecimiento, 6-Bencilaminopurina (6-BAP) y Ácido indolacético (AIA) para la multiplicación de los cultivares de malanga ‘INIVIT MX-2007’ y ‘México-8’, para así incrementar el coeficiente de multiplicación y obtener explantes con alta calidad para así contribuir a la generalización de estos clones en las Biofábricas. En ambos cultivares se utilizó como control 3,0 mg.L-1 de 6-BAP (6-Bencilaminopurina) y 1,0 mg.L-1de Ácido Indolacético (AIA). Cuando se realizaron las evaluaciones a los 15 días de cultivo se determinó que al utilizar el medio de cultivo con 3,0 mg.L-1 de 6-BAP y 1,5 mg.L-1 de AIA aumentó el coeficiente de multiplicación de 1,02 a 2,51 en el cultivar de malanga ‘INIVIT MX-2007’, mientras que con 3,0 mg.L-1 de 6-BAP y 0,5 mg.L-1 de AIA permitió incrementar el coeficiente de multiplicación de 1,25 a 2,70 en el cultivar ‘México-8’ logrando una mayor introducción de explantes en las Biofábricas con mejor calidad.

Detalles del artículo

Cómo citar
Basail Pérez, M., Medero Vega, V. R., Santos Pino, A., Torres Núñez, Y., Robaina Jiménez, A., López Torres, J., … Gutiérrez Sánchez, Y. (2017). Influencia del medio de cultivo en la multiplicación in vitro de Xanthosoma, cvs. ‘INIVIT MX-2007’ y ‘México-8’. Agricultura Tropical, 3(1). Recuperado a partir de https://agriculturatropical.edicionescervantes.com/index.php/inivit/article/view/64
Sección
Artículos originales
Biografía del autor/a

Milagros Basail Pérez, Instituto de Investigaciones de Viandas Tropicales (INIVIT)

Master en Biotecnología Vegetal, Investigadora Auxiliar, INIVIT

Víctor Reinaldo Medero Vega, Instituto de Investigaciones de Viandas Tropicales (INIVIT)

Doctor en Ciencas Agrícolas, Investigador Titular, Director de Biotecnología Vegetal, INIVIT.

Citas

ARCHIBALD, K. 2003. Caribbean Agricultural Research and Development Institute (CARDI). Ann. Rep, p. 10-12.
ARCHIBALD, K. 2005. Caribbean Agricultural Research and Development Institute (CARDI). Ann. Rep, pp. 6-11.
ASTUDILLO, J. 2013. Establecimiento y multiplicación in vitro de malanga coco (Colocasia esculenta L. Schott). Proyecto especial de graduación presentado como requisito parcial para optar al título de Ingeniero Agrónomo en el Grado Académico de Licenciatura. Escuela Agrícola Panamericana, Zamorano Honduras, pp. 1-17.
CAÑAL, M, 1999. Fisiología del cultivo in vitro. En: Biotecnología vegetal: Libro de reportes cortos del 5to coloquio internacional de Biotecnología vegetal, IBP, Santa Clara, Cuba, p. 14-22.
CHIEN, Y.; K. JPING y R. DONALD. 2008. In vitro micropropagation of white dasheen (Colocassia esculenta). African Journal of Biotechnology, 7(1): 41-43.
DANTAS, K.; M. CAÑAL; M. CENTENO; I. FEITO y B. FERNÁNDEZ. 1997. Endogenous plant growth regulators in carnation Tissue Cultures Ander different condition of ventilation. Plant Cell Reports, 22: 169-174.
DAQUINTA, M.; L. RAMOS y Y. LEZCANO. 2000. Algunos elementos en la micropropagación de la Teca. Biotecnología Vegetal, 1 (2): 39-44.
FAO, FAOSTAT. 2011. Statistics division. http://faostat.fao.org/site/526/default.aspx.
GARCÍA, M.; V. MEDEROS; S. RODRÍGUEZ; J. LÓPEZ; J. VENTURA; M. CABRERA; R. HERNÁNDEZ; J. GONZÁLEZ; D. BERMÚDEZ; D. GÁLVEZ; V. GUTIÉRREZ y J. GÁLVEZ. 1999. Generalización de la micropropagación de la malanga (Xanthosoma spp.) en Cuba. En: 5to Coloquio Internacional de Biotecnología Vegetal, p. 167-169.
GARCÍA, L.; M. PÉREZ Y D. TORRES. 2015. Efecto de 6-BAP en la multiplicación in vitro de Spathiphyllum wallisii Regel. Biotecnología Vegetal, 15(1): 59-62.
GONZÁLEZ, J. 2005. Diagnóstico de enfermedades virales pertenecientes al género de los potivirus en los genotipos de ñame ‘Pacala Duclos’ (Dioscorea alata L.) y Ñame de Guinea (Dioscorea rotundata Poir.). Aplicación de la corriente eléctrica al saneamiento. Tesis presentada en opción del título de Master en Ciencias. Instituto de Biotecnología de las Plantas, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Central “Marta Abreu” de Las Villas, Cuba, 57 p.
GUZMÁN, O y CASTAÑO, J. 2002. Reconocimiento de nemátodos fitopatógenos en plátanos ´Dominico hartón´ (Musa AAB, Simmonds), ‘África’, ‘FHIA 20’ y ‘FHIA 21’ en Colombia. InfoMusa, 11 (2): 34-35.
JIMÉNEZ, G. 1997. Curso teórico-técnico de propagación masiva de plantas. Santa Clara, p. 25-30.
JIMÉNEZ, E y DE FERIA, M. 2005. Empleo de Biorreactores para la Propagación Masiva. En: Propagación y Mejora Genética de Plantas por Biotecnología. Instituto de Biotecnología de las plantas, Universidad Central de Las Villas, Pérez, J. N. (Ed.), Santa Clara, Cuba, p. 207-222.
MONCALEÁN, P.; J. CAÑAL; I. FEITO y A. RODRÍGUEZ. 1999. Cytokinins and mineral nutrition in shorts of Actinide cultured in vitro. J. Plants Physiol, 2: 12-14.
MURASHIGE, T Y SKOOG, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco Tissue Cultures. Physiologia Plantarum, pp. 473-497.
LERCH, G 1977. La experimentación en las Ciencias Biológicas y Agrícolas. Ed. Científica y Técnica. La Habana. 288p.
RODRÍGUEZ, A.; A. RODRÍGUEZ Y S. QUINTERO. 2009. Caracterización de germoplasma y mejoramiento participativo en especies de raíces y tubérculos alimenticios tropicales y en musáceas. Simposio Internacional y Taller de Fitomejoramiento Participativo en América Latina y el Caribe. Ecuador, Quito. 31 Agost- 8 Sept. CD-R Prog. PRGA. http://www.brga.program.org/brga.
RODRÍGUEZ, S.; M. GARCÍA; V. MEDEROS; S. RODRÍGUEZ; J. LÓPEZ y J. VENTURA. 2010. El cultivo de la malanga isleña (Colocasia esculenta) en Cuba. Conferencia Consejo Técnico Asesor, MINIAG. INIVIT, 15p.
SANTOS, A.; J. LÓPEZ; M. BASAIL; Y. GUTIÉRREZ; A. RAYAS; V. MEDERO; D. RODRÍGUEZ; D. RODRÍGUEZ; Y. BEOVIDES; D. REINALDO y M. BAUTA. 2017. Efecto de 6-BAP y AIA en el establecimiento in vitro de meristemos de Colocasia esculenta (L.) Schott cv. ‘INIVIT MC 2012’. Biotecnología Vegetal, 17(1): 67-70.
SIGMA. 1991. Catalogue. Sigma Chemical Company. EUA.
VILCHEZ, J. 2001. Embriogénesis somática y regeneración de plantas de guayabo (Psidium guajavo L.) cv. Enana Roja Cubana EEA. Tesis de Maestría. Instituto de Biotecnología de las Plantas, 60p.
VILCHEZ, J.; Y. RIVAS; N. ALBANY; M. MOLINA y L. MARTÍNEZ. 2009. Efecto de la 6-bencilaminopurina sobre la multiplicación in vitro de ocumo criollo (Xanthosoma sagittifolium L. Schott). Revista de la Facultad de Agronomía, 26 (2): 212-222.