EFECTO DE LA CONCENTRACIÓN DE SALES EN EL MEDIO DE CULTIVO PARA CONSERVACIÓN IN VITRO DE PLÁTANOS (Musa spp.)
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Resumen
conservación de la biodiversidad es estratégica para satisfacer las demandas crecientes actuales y futuras de la población mundial, de ahí que los bancos de recursos genéticos surjan como una respuesta a la necesidad de conservar el patrimonio genético vegetal, por lo que constituyen la base para una agricultura dinámica, diversificada y sostenida. Las técnicas de cultivo de tejidos vegetales en musáceas, constituye una de las prácticas más importantes de la biotecnología tanto para la obtención de grandes volúmenes de plantas de plátanos y bananos libre de plagas y enfermedades como en la conservación e intercambio de germoplasma. De entre la gran diversidad de medios de cultivo utilizados en el cultivo de tejidos vegetales, el recomendado por Murashige y Skoog (1962) (MS) es el más conocido. El presente trabajo se realizó con el objetivo de determinar la concentración mínima de sales minerales a utilizar en la conservación in vitro del plátano. Se estudiaron cuatro concentraciones de las sales MS (25, 50, 75 y 100 %). Se utilizaron los cultivares de plátano ‘INIVIT PB 2012’ (tipo burro) e ‘INIVIT PV 06-30’ (tipo vianda). Con la disminución de la concentración de sales se observó un incremento en la oxidación fenólica y disminución de la altura, número de hojas y coeficiente de multiplicación, siendo estas diferencias más marcadas en el cultivar ‘INIVIT PV 06-30’.
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Citas
ANDERSON, U. y G. IEVINSH. 2002. Changes of morphogenic competence in mature Pinus sylvestris L. buds in vitro. Annals of Botany, 90:293-298.
CAPOTE, A.; F. ÁLVAREZ; Z. FUNDORA; Y. RODRÍGUEZ; O. PÉREZ y D. FONSECA. 2002. Evaluación de un agente gelificante cubano, Natugel, en el cultivo in vitro de plántulas de tomate. Biotecnología Aplicada 19(1-2): 1-4.
CASTRO D.; J. DÍAS y N. MONTOYA. 2002. Propagación clonal de bananos en biorreactores de inmersión temporal. In: Acorbat. Memorias XV reunión realizada en Cartagena de Indias, Colombia, 27 de octubre al 2 de noviembre de 2002. Medellín, Colombia. Asociación Colombiana de Bananeros (AUGURA); p 44-8.
COLMENARES, M. y C. GIMÉNEZ. 2003. Multiplicación in vitro Musa spp. mediante sistema de inmersión temporal. Rev. Fac. Agron. 20(4):25-31.
ESPINOSA, A.L.; J.J. SILVA y M. CAISE. 2020. Multiplicación in vitro del clon de plátano ‘INIVIT PV 06-30’ (Musa spp.) en condiciones de biofábricas. REDEL. Revista científico-educacional de la provincia Granma, 16: 181-190.
FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION (FAO). 2020. Seguridad Alimentaria bajo la Pandemia de COVID-19. Disponible en: http://www.fao.org/3/ca8873es/CA8873ES.pdf.
GALÁN, V.; A. RANGEL; J. LÓPEZ; J.B. PÉREZ; J. SANDOVAL; H. SOUZA. 2018. Propagación del banano: técnicas tradicionales, nuevas tecnologías e innovaciones. Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal 40(4): (e-574). DOI: http://dx.doi.org/10.1590/0100-29452018574.
GAMBORG, O.L; T. MURASHIGE; T.A. THORPE y I.K. VASIL. 1976. Plant tissue culture media. In vitro 12(7): 473-477. DOI: 10.1007/BF02796489.
HIDALGO, R. 2003. Variabilidad genética y caracterización de especies vegetales. En: Análisis estadístico de datos de caracterización morfológica de recursos fitogenéticos (Franco, TL e Hidalgo, R., Eds.). Boletín técnico. Cali, Colombia: Instituto Internacional de Recursos Fitogenéticos (IPGRI); p. 2-26.
HOYOS, J.; R. PEREA y R. VELASCO. 2008. Evolución del efecto de diferentes concentraciones de fitohormonas en la micropropagación de plátano Dominico hartón (Musa AAB, Simmonds). Biotecnología en el sector agropecuario y agroindustrial, 6(2): 7-18.
LASSOUDIERE, A. 2007. Le Bananier et sa Culture. Collection Savoir Aire, ditions Quae: Versailles, France. p. 384.
MARTÍNEZ-SOLÓRZANO, G.E. y J.C. REY-BRINA. 2021. Bananos (Musa AAA): Importancia, producción y comercio en tiempos de Covid-19. Agron. Mesoam. 32(3):1034-1046. ISSN 2215-3608 DOI:10.15517/am.v32i3.43610.
MILIÁN, M.D. 2018. Recursos genéticos de la malanga del género Xanthosoma Schott en Cuba. Cultivos Tropicales, 39(2): 112-126.
MURASHIGE, T. and F. SKOOG. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3): 473- 497.
RAMÍREZ, M.; H. LINDORF y E. GARCÍA. 2008. Cambios morfoanatómicos en los ápices del vástago y de la raíz del banano ‘Williams’ (AAA, Musa sp.) bajo distintas concentraciones de N6-benciladenina. The Journal of agriculture of teh University of Puerto Rico 92(1-2): 53-73.
RIOS, G.; N. AÑEZ; M. RAMÍREZ; B. BRACHO; D. ARAUJO; H. SUÁREZ y J. NAVA. 2013. Cultivo in vitro de yemas, tratadas con benciladenina, provenientes de cormos enteros o seccionados de plátano ‘Cambur manzano’. Bioagro, 25(2): 137‑142.
RODRÍGUEZ, A.J.; A. RODRÍGUEZ; S. QUINTERO; M.A. TORRES y Z. FUNDORA. 2004. Influencia de los medios de cultivo en la micropropagación de plátano (Musa spp.) y malanga (Xanthosoma sagittifolium Schott.) Cultivos Tropicales, 25(1):23-26.
SZABADOS, L.; V.M. NÚÑEZ; L.M. TELLO; G. MAFLA; J.C. ROA; W.M. ROCA. 1991. Agentes gelatinizadores en el cultivo de tejidos. In: Roca, William M.; Mroginski, Luis A. (eds.). Cultivo de tejidos en la agricultura: Fundamentos y aplicaciones. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali, CO. Publicación CIAT No. 151: 79-93.
UZCÁTEGUI, J.P.; Y. HERNÁNDEZ; D. OSORIO y M. RIVAS. 2010. Evaluación del comportamiento in vitro de ápices de plátano Musa AAB cv. ‘Hartón’ y ‘Hartón Doble Tallo’. Producción Agropecuaria/ Biotecnología, 3(1): 7-12.
VILLEGAS, Z.; C. GIMÉNEZ; J. VÍLCHEZ, M. MORENO; L. SANDOVAL y M. COLMENARES. 2008. Oxidación en la inducción de la embriogénesis somática a partir de flores masculinas inmaduras de Gran Enano (Musa AAA). Rev. Fac. Agron. Caracas 25(3): 25-29.